小鼠小腸類器官作為一種體外模型,廣泛應(yīng)用于腸道疾病研究、藥物篩選等領(lǐng)域。類器官構(gòu)建細(xì)胞來(lái)源通常有原代細(xì)胞和干細(xì)胞兩種,由于小鼠腸道原代細(xì)胞來(lái)源廣泛、能夠更好地模擬體內(nèi)真實(shí)情況、培養(yǎng)相對(duì)簡(jiǎn)單,能夠滿足大多數(shù)研究和應(yīng)用需求,因此,小鼠小腸類器官通常使用組織分離出的原代細(xì)胞構(gòu)建。今天我們就來(lái)看看如何利用原代細(xì)胞構(gòu)建小鼠小腸類器官。

材料準(zhǔn)備
♦ 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物:根據(jù)實(shí)驗(yàn)要求選擇合適的小鼠品系。
♦ 實(shí)驗(yàn)試劑:小鼠小腸類器官用培養(yǎng)基(可自行配制,也可直接購(gòu)買),基質(zhì)膠,DPBS,組織消化液等。
♦ 實(shí)驗(yàn)耗材:無(wú)菌操作所需的培養(yǎng)皿、離心管、移液槍頭、24孔板等,以及用于細(xì)胞過(guò)濾的70μm細(xì)胞濾網(wǎng)。
實(shí)驗(yàn)步驟
♦ 小腸組織取材
1. 小鼠處死后,表面噴灑酒精殺菌。在無(wú)菌環(huán)境下截取出近胃端處3-15cm腸組織,用鑷子小心去除腸道外部的腸系膜、脂肪,放入4℃預(yù)冷的含1%雙抗的DPBS溶液中。
2. 使用注射器沖洗腸道2-3次,用手術(shù)剪將腸管小心剪開(kāi),腸腔面朝上,用手術(shù)刀片輕輕刮去腸腔表面腸絨毛,待腸絨毛被刮凈后(呈現(xiàn)透明),將腸組織置于新的含DPBS的培養(yǎng)皿中清洗2-3次。

♦ 隱窩分離
1. 將清洗后的小腸組織剪碎至2mm寬大小,轉(zhuǎn)移至新的50ml離心管中,用DPBS小心清洗3-5次,除去腸絨毛細(xì)胞和漂浮脂肪組織。
2. 在清洗好的小腸碎片組織加入10-15ml含有3-5mM EDTA的預(yù)冷DPBS中消化,4℃孵育30min左右,其間每10min輕搖一次離心管。
3. 消化完成后,棄去EDTA消化液上清,用新的DPBS緩沖液將組織輕柔漂洗2-3次以去除剩余EDTA。
4. 在小腸組織碎片中加入10-15ml預(yù)冷的含0.1%BSA的DPBS,反復(fù)吹打、重懸,使隱窩與基底層分離,然后取少許懸液鏡檢,當(dāng)看有大量隱窩樣結(jié)構(gòu)后,停止吹打,并對(duì)吹打后的組織懸液使用70μm濾網(wǎng)過(guò)濾并收集穿過(guò)濾網(wǎng)的組織懸液。
5. 收集得到的組織懸液,1500rpm、4℃離心3min。

♦ 基質(zhì)膠包埋與培養(yǎng)
1. 用基質(zhì)膠重懸隱窩組織沉淀,使每10μL基質(zhì)膠懸液包含200-600個(gè)隱窩,重懸后混合液置于冰上,盡快操作以避免基質(zhì)膠凝固。
2. 將混合懸液種植于24孔板底部正中央,每孔30-50μL左右,不接觸孔板側(cè)壁。
3. 將種植后的培養(yǎng)板至于37℃二氧化碳恒溫培養(yǎng)箱中,孵育30min左右待基質(zhì)膠凝固。
4. 待基質(zhì)膠完全凝固后,沿壁緩慢加入小鼠腸類器官培養(yǎng)基,每孔800μL/孔。
5. 將24孔板置于37℃二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。每3天更換一次新鮮培養(yǎng)基并監(jiān)測(cè)類器官生長(zhǎng)狀態(tài)(一般小鼠小腸類器官在5-7天內(nèi)形成)。

小鼠小腸類器官不同天數(shù)生長(zhǎng)情況
注意事項(xiàng)
♦ 無(wú)菌操作:整個(gè)構(gòu)建過(guò)程需嚴(yán)格遵守?zé)o菌操作原則,避免污染。
♦ 溫度控制:基質(zhì)膠操作需在冰上進(jìn)行,避免其提前凝固;培養(yǎng)基在使用前需恢復(fù)至室溫。
♦ 操作輕柔:在分離隱窩和處理基質(zhì)膠時(shí),動(dòng)作要輕柔,避免產(chǎn)生氣泡或破壞隱窩結(jié)構(gòu)。
希望以上內(nèi)容能夠幫助你順利構(gòu)建小鼠小腸類器官,有問(wèn)題歡迎大家留言討論哦。
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