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絕對定量轉(zhuǎn)錄組測序——拯救你的微量樣本

作者:上海吉凱基因醫(yī)學(xué)科技股份有限公司 2023-04-06T09:43 (訪問量:21163)

小編常常收到老師們的問題:我想做測序,我想做蛋白組學(xué)……但是我的樣本不夠啊,不符合你們的送樣標(biāo)準(zhǔn),這可怎么辦!!!!

別著急小編今天就給大家介紹兩種絕對定量測序:UMI mRNA-seq和UMI miRNA-seq,完美解決樣本量不夠的問題,順便還能得到比常規(guī)測序更精準(zhǔn)的結(jié)果,大家一起來了解一下。

什么是絕對定量測序

傳統(tǒng) RNA-seq 定量分析過程中,由于建庫過程中PCR 對片段長度和 GC 堿基含量的偏好會導(dǎo)致部分文庫片段豐度失真,進(jìn)而對定量結(jié)果產(chǎn)生影響。
UMI(Unique Molecular Identifier)分子標(biāo)記則通過隨機(jī)性利用不同的分子標(biāo)簽,標(biāo)記和區(qū)分不同的分子。絕對定量轉(zhuǎn)錄組測序(UMI-seq)通過在文庫擴(kuò)增前為每一條逆轉(zhuǎn)錄的 cDNA 添加的分子標(biāo)簽UMI,使同一個片段擴(kuò)增出來的產(chǎn)物均帶有相同的標(biāo)簽,天然重復(fù)片段則帶有不同的標(biāo)簽。利用 UMI 過濾數(shù)據(jù),可一比一準(zhǔn)確還原樣本初始狀態(tài)。UMI標(biāo)記測序的結(jié)果與Q-PCR檢測結(jié)果一致性高,甚至對于低豐度表達(dá)的基因也能較準(zhǔn)確的測出
UMI 標(biāo)記方式示意圖[1]

被隨機(jī)分子標(biāo)簽標(biāo)記的 cDNA 分子,在PCR擴(kuò)增、建庫測序及后續(xù)分析過程中都攜帶著這個獨特的 UMI 標(biāo)簽。分析的時候計數(shù) UMI 的個數(shù),通過去重的辦法去掉由于PCR偏好性多余擴(kuò)增的UMI分子數(shù),可以完美還原原始組成中不同RNA分子的比例,可實現(xiàn)原始RNA 分子的 “絕對定量”。
UMI絕對定量示意圖
絕對定量測序(UMI-seq)的產(chǎn)品優(yōu)勢

一、更低的樣本量,建庫起始量低,mRNA-seq只需50ng,miRNA-seq只需200ng的Total RNA就能順利進(jìn)行mRNA/small RNAseq,更適合量少與珍貴樣品;


二、更準(zhǔn)確的定量分析結(jié)果,差異基因與Q-PCR驗證一致性更高,極大縮短實驗?zāi)繕?biāo)篩選時間。據(jù)文獻(xiàn)報道,普通RNA-seq和miRNA-seq與Q-PCR驗證的相關(guān)性為70%和35%,使用UMI建庫,相關(guān)性可以達(dá)到80%以上;
Q-PCR法測定已知量UMI與實際測試UMI量的相關(guān)性[3] Q-PCR驗證UMI miRNA差異基因分析[3]

三、更穩(wěn)定的定量分析結(jié)果,避免低豐度基因丟失,可為致病及易感基因篩選等提供精準(zhǔn)分析;
普通文庫實際定量與模擬定量計算的相關(guān)性和穩(wěn)定性[2] UMI文庫實際定量與模擬定量計算的相關(guān)性和穩(wěn)定性[2]

四、可區(qū)分天然重復(fù)和擴(kuò)增重復(fù)的區(qū)別,準(zhǔn)確識別可變剪切事件。

絕對定量測序(UMI-seq)測序方案

測序平臺:illumina Novaseq 6000
測序模式:PE150

絕對定量測序(UMI-seq)生信分析內(nèi)容
UMI mRNA-seq分析流程
UMI miRNA-seq分析流程

絕對定量測序(UMI-seq)的應(yīng)用范圍

比較轉(zhuǎn)錄組
要求精準(zhǔn)的序列信息,從表達(dá)水平反應(yīng)轉(zhuǎn)錄組進(jìn)化的動態(tài)變化,并尋找潛在的驅(qū)動基因變化。

個體機(jī)制
要求準(zhǔn)確的mRNA、smallRNA差異基因分析,構(gòu)建miRNA及其靶基因的相關(guān)調(diào)控網(wǎng)絡(luò)。

互作轉(zhuǎn)錄組
寄生類RNA表達(dá)豐度較低,可通過增加PCR循環(huán)次數(shù)提高檢出率同時保證準(zhǔn)確性。

生物標(biāo)志物
適用于起始量較低或者富集較困難樣本。

【參考文獻(xiàn)】
1.S. Mangul, et al. UMI-Reducer?: Collapsing duplicate sequencing reads via Unique Molecular Identifiers. bioRxiv, 2017 pp. 1–11.
2.Katsuyuki Shiroguchi, Tony Z. Digital RNA sequencing minimizes sequence dependent bias and amplification noise with optimized single-molecule barcodes. PNAS. 2012, 109: 1347-1352.
3.Pieter Mestdagh,Evaluation of quantitative miRNA expression platforms in the microRNA quality control(miRQC) study. Nature Methods. 2014, 29.
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